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    貝賽爾特學習園地|陳朝熙:支原體檢測

    支原體檢測

    支原體(mycoplasma)屬于細菌域原核生物界硬壁菌門中低 c、G含量的革蘭陽性桿菌分支柔膜體綱(Mollicutes),是一類缺乏細胞壁的原核細胞型微生物 ,大小介于細菌與病毒之間,呈高度多形性,有球形、桿形、絲狀、分枝狀等多種形態。在細胞培養過程中,支原體感染發生率達30%~60%,隨著細胞培養技術的廣泛應用,組織、細胞、疫苗等受支原體污染的現象越來越普遍。

    污染細胞最常見的支原體包括:發醉支原體(M.fementans)、豬鼻支原體(M.hyorhinis)、口腔支原體( M.orale )、精氨酸支原體( M.arginina )、梨支原體(M.pirum)、唾液支原體(M.salivarium)和人型支原體(M.hominis)。被這些支原體污染的細胞常常不引起明顯的細胞病變,也不導致培養液渾濁,難以憑肉眼發現,因此,建立一種高效、快速、敏感度高的檢測方法十分必要。

    支原體的檢測方法有很多種,《中國藥典》中支原體檢測方法包括培養法、DNA熒光染色法,其他方法還有酶法、PCR法、ELISA法、間接免疫熒光試驗、生化檢測法、直接血凝試驗、探針法、放射自顯影法等。每種方法各有利弊,不同方法的支原體檢出率也有差別,一般在5% ~87%之間。本次講述培養法、DNA熒光染色法、PCR法檢測。

    1、培養法

    方法:配制支原體培養基,取1 mL細胞培養液,接種于液體培養基中,37 ℃培養,同時觀察是否有混濁或pH值改變。2周后,分別取0.1 mL液體培養液涂在瓊脂平板上,倒置于37 ℃厭氧箱培養,至少3周,持續觀察是否有支原體菌落出現,有圓形無色透明菌落出現為陽性。

    評價:此法是較早采用的方法。在固體瓊脂培養基、半固體或液體培養基上培養 Vero、NIH3T3 等易被支原體污染的細胞株,可在其中分離到支原體菌株。培養法得到支原體菌株是最可靠的陽性指標。該方法的缺點是靈敏度低,不能檢測到種屬且不適用于檢測所有支原體。

    2、DNA熒光染色法

    方法:

    ①制備標本。首先,在六孔板中制備蓋玻片細胞培養物,然后將待測細胞接種到蓋玻片上,用培養液培養 1 ~ 2 d。采用有支原體污染的細胞作陽性對照,無支原體污染的細胞作陰性對照。

    ②固定。首先,吸出培養液,用新鮮配制的 1∶3冰醋酸 /甲醇固定液固定 15 min;然后,吸出固定液后重復固定一次;最后,吸除固定液室溫下干燥。

    ③染色。用 pH值 7.2的 PBS稀釋Hoechst33258儲存液,使終濃度為 5μg/ml;然后將染液滴加到固定好的細胞上,室溫下避光染色 30 min。

    ④洗滌。用雙蒸水浸泡染色過的蓋玻片 3次,每次 3 ~ 5 min。⑤封片。滴加 1滴含 50%甘油的檸檬酸緩沖液( pH值 5.5)到染色過的細胞表面,然后將蓋玻片上有細胞的一面朝下,覆蓋在載玻片上。⑥觀察。在熒光顯微鏡下觀察細胞的熒光分布狀態,判斷有無支原體污染及污染程度。

    評價:利用熒光燃料 Hoechst33258 能與DNA 特異性結合的性質,在熒光顯微鏡下觀察被支原體污染的細胞時,除細胞核外,在細胞膜上及細胞之間也有熒光顆粒。熒光染色法分為直接法和間接法兩類,直接法即用染色劑將待測細胞直接染色;間接法指在無污染指示細胞中加入待測細胞上清液,進行混合培養后再染色,因此間接法的靈敏度高于直接法。

    3、PCR法

    方法:采用酚氯法提取待測細胞DNA,引物為常見污染支原體種類16sRNA的保守區域序列,長度472 bp,引物A:5’-GGCGAATGGGTGAGTAACACG-3’,引物B:5’-CGGATAACGCTTGCGACCTATG-3’。PCR總反應體積為25 μL,加入PCR緩沖液、氯化鎂、Taq酶、dNTP、模板和引物。擴增條件為:94 ℃預變性3 min,94 ℃變性25 s,58 ℃退火45 s,72 ℃延伸45 s, 循環30次后,72 ℃恒溫7 min。取9 μl擴增產物與1 μl 10×Loading Buffer混合后,加入含0.5 μg/ml溴化乙錠的1.5%瓊脂糖凝膠,75V電泳25 min,用紫外檢測儀觀察并用凝膠成像系統照相,有目的片段出現為陽性。

    評價:PCR 法是目前常用的支原體污染檢測方法,其原理是根據具有支原體種或屬特征的核酸序列(一般用 16S rRNA)設計引物,經預變性、擴增、延伸后得到擴增產物,進行瓊脂糖凝膠電泳實驗后,通過凝膠上條帶的位置進行判斷待測物是否感染了支原體。PCR 法靈敏度高,檢測時間短,操作簡便,但仍然存在一定缺陷:如易出現假陽性或假陰性等。近年來出現了兩步法 PCR 檢測支原體污染的方法,即在第一次 PCR 的基礎上,再進行第二次 PCR。其原理與 PCR 理相同,只是分別采用外引物 (outer p rimer) 和內引物 (inner primer) 分兩輪進行擴增,相對于傳統 PCR 法而言,其準確性、特異性和靈敏度均有所提高。

    細胞制劑質控標準檢測項目至少包括內毒素檢測、無菌檢測、支原體檢測、細胞數量、細胞存活率、細胞表型等的檢測。支原體檢測在質檢中也具有很重要的地位。支原體感染細胞后一般難于清除,事實上,被支原體污染的細胞,即使污染被清除,細胞原有的生物學特性,如基因的表達、抗原性和代謝特點也隨之發生了相應的改變,會對研究結果造成嚴重影響。為了保證細胞體系免受污染的影響,關鍵是加強預防盡可能減少污染的發生,一般需要在培養液中加入抗生素;另外,清潔的實驗室環境和良好的操作習慣,優質的試劑,如血清、培養基等都是很重要的。

    產考文獻: [1] 盧勇,賈繼宗,唐靜等.3種支原體檢測方法的比較.中國生物制品學雜志.2015.10
    [2] 劉謀淵,劉嵐,趙嬌等.動物細胞培養中支原體污染的檢測方法比較研究.現代醫藥衛生.2011
    [3] 甘一迪,王銀銀,任芳麗等.培養細胞污染支原體的PCR檢測方法的建立及應用.中國醫藥生物技術.2011.08
    [4] 張向萍.細胞培養過程中發生支原體污染的影響及檢測.醫藥與衛生
    [5] 呂沅岡,喻峰.細胞培養中支原體污染的檢測.細胞生物學雜志
    [6] 趙俊,王興滿,胡勇等.動物細胞培養物中支原體污染的檢測.安徽農業科學.2010
    [7] Rottem S. Sterols and acylated proteins in mycoplasmas. Biochem Biophys Res Commun.2002
    [8] 中國藥典.2015年版
    [9] 免疫細胞制劑制備質量管理自律規范.2016年版
    [10] 細胞治療產品研究與評價技術指導原則(試行).2017年版

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